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wb只有背景权威发布_b站永久封禁真的无解吗(2024年12月精准访谈)

内容来源:百业图库所属栏目:观点更新日期:2024-12-01

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WB实验背景脏?6个步骤教你解决! 在进行WB(Western Blot)实验时,背景脏是一个常见的问题。𐟘“ 明明跑出了想要的趋势,但背景却一团糟,这该如何解决呢?其实,背景脏并不一定是因为仪器不干净,也可能是蛋白降解或者实验条件不合适导致的。以下是一些可能出错的关键步骤,以及如何避免这些问题的建议: 实验准备 首先,确保所有用于提取蛋白的研磨器材、制胶的玻璃板和梳子都清洗干净。如果这些器材长时间不使用,建议在使用前再次清洗,以杜绝污染。 提取蛋白 选择合适的蛋白裂解液,这样可以去除一些干扰因素,如核酸、多糖和脂类等。蛋白在测量浓度后应变性分装保存,避免反复冻融导致蛋白降解。此外,确保Loading buffer在保质期内,并在加入蛋白后充分混匀,再煮沸变性。 制胶 在制胶过程中,玻璃板夹紧后,有些人习惯性加水测试是否漏胶。建议用蒸馏水而不是自来水测试,测试结束后要将玻璃板之间的水倒干净,用滤纸吸干残留的水。灌胶前要将配好的试剂充分混匀,灌胶时要掌握好速度,缓慢加入,避免产生气泡。灌注好分离胶后,缓缓加入无水乙醇封胶,速度一定要慢,防止胶面被冲变形。温度较高时,30分钟左右就会凝固;冬天气温较低可能需要较长时间。若分离胶液面不平,会影响后期蛋白电泳的效果。 转膜 转膜前需在转膜板两侧各放置3至4张滤纸(两侧数量相同)。切记不要用手直接接触PVDF膜和滤纸,手上的油脂会对其造成污染,务必佩戴干净的手套,全程尽量使用镊子夹取。转膜过程中海绵-滤纸-凝胶-PVDF膜-滤纸-海绵每一层的气泡要排空。转膜时要使整个电转仪置于冰水混合物中,常用220V或者其他高电压进行。机器温度升高会使蛋白降解,导致转膜后条带跑糊,发光后条带和背景也会脏得一塌糊涂。 孵育抗体 孵育一抗的时间大多选择4℃过夜,也可以室温封闭2小时。4℃过夜效果会比室温好。二抗孵育的时间不宜过长,一般是室温下摇床孵育1到2小时。抗体孵育完成后要清洗干净,特别是二抗孵育完成后,否则可能导致显影结果出现高背景。 发光液配置 大部分实验室使用的ECL发光液,A液和B液按照1:1的比例配置。发光液要求现用现配,每次根据使用量合理配置用液量。发光液配置时间过长同样会引起发光效果不好,背景脏或者漆黑一片。 通过以上步骤,可以有效解决WB实验背景脏的问题,让你的实验结果更加清晰准确!𐟒ꀀ

𐟓𘠗B实验避坑指南:封闭孵育与显影技巧 1. 𐟥› 封闭技巧:封闭的目的是用牛奶中的非抗原蛋白覆盖膜上的抗体,减少背景干扰,使条带更清晰。封闭时间应足够长,通常至少一个半小时。如果时间紧迫,可以使用快速封闭液,但效果可能稍差。 𐟥› 封闭液选择:脱脂牛奶用于磷酸化蛋白的封闭是可行的,但食品级奶粉不行,实验级奶粉可以尝试。BSA的封闭效果不如牛奶,背景较脏。 𐟧ꠤ𘀦Š—使用注意事项: 𐟔 抗体稀释浓度:根据说明书范围调整,背景过深时降低浓度,条带信号弱时增加浓度。 𐟏ž️ 抗体适用范围:确保抗体适用于WB,并与人源或鼠源样本匹配。 𐟐𐠦Š—体宿主:选择匹配的二抗,一抗通常是兔抗或鼠抗。 𐟓… 特殊说明:注意抗体是否有特殊孵育时间和曝光时长要求。 𐟧ꠤ𘀦Š—孵育:使用孵育盒,每个孔至少加3.5ml抗体。第一次配4ml,每次使用后回收抗体,补加TBST和抗体原液。回收后的抗体在4度保存一周失效,-20度可保存一个月。 𐟐 二抗选择:通常选择羊抗,与一抗匹配。经费紧张时,二抗可回收使用3-4次。 𐟓𘠦˜𞥽𑦊€巧:显影液要均匀滴在条带上,正反两面都要滴。显影液会失效,自动曝光时间较长时需更换新液。显影时将蛋白面朝上,如果显影不好,可以尝试翻面显影。 ⚠️ 不推荐的方法:不均匀滴显影液可能会影响结果。 通过这些技巧,可以有效提高WB实验的准确性和可靠性。

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WB实验封闭技巧:如何选择合适的封闭液? 在上一篇文章中,我们讨论了如何在WB实验中进行湿转,今天我们来聊聊封闭这一关键步骤。封闭的目的是为了防止一抗的非特异性结合,从而避免产生非特异条带或背景杂乱。 封闭液的选择 𐟧ꊊ选择正确的封闭液可以促进抗原抗体更好地结合。你可以通过抗体说明书来确定是否有特殊的封闭方法,或者根据实验结果进行调整。以下是两种常见的封闭液及其优缺点: 脱脂奶粉 𐟥› 脱脂奶粉含有多种蛋白,封闭效果全面。它是最常用的封闭液之一(浓度2.5-5% w/v),经济实惠。然而,由于含有少量残留的生物素和碱性磷酸酶(AP),它不适用于生物素标记和AP标记的抗体系统。此外,脱脂奶粉中含有酪蛋白,这是一种磷酸化蛋白,会导致抗体的非特异性结合,使条带背景变脏,因此不适合用于磷酸化蛋白的检测。 牛血清白蛋白 (BSA) 𐟐‚ 对于磷酸化蛋白的检测,推荐使用BSA(浓度2-5 % w/v)。与脱脂奶粉相比,BSA更适用于磷酸化蛋白的检测。需要注意的是,普通级别的BSA可能含有IgG或其他血清蛋白,这些蛋白会与哺乳动物抗体(如抗牛、山羊、绵羊、马等二抗)产生交叉反应,增加非特异性背景信号。因此,建议使用不含IgG的BSA产品。相对于脱脂奶粉,BSA不含生物素,对于生物素标记的抗体系统而言,可能是最好的选择。 通过选择合适的封闭液,你可以有效避免非特异性结合,从而提高WB实验的准确性和可靠性。希望这些信息对你有所帮助!

WB显色背景过高?试试这个小技巧! 你是否遇到过这样的困扰:曝光时间太短,目的条带不显示,增加上样量也无济于事,只能通过延长曝光时间来解决问题𐟘“。然而,这样一来背景又变得模糊不清,影响实验结果。 在实验时间紧迫,老板又要求展示整张膜的情况下,我们可以通过一个小技巧来解决这个问题。我们可以在曝光时用锡纸盖住其他部分,但不要遮盖maker,否则可能会让结果看起来像是剪了膜。 这个方法虽然简单,但非常实用。只要稍微调整一下曝光条件,就能轻松解决背景过高的问题。希望这个小技巧能帮到你,让你的实验更加顺利!𐟒ꀀ

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𐟔젨磦žWB实验中的非特异性条带现象 𐟌ˆ 𐟓Š 案例一:无信号的尴尬 可能原因:抗体加错、转膜问题等。 解决方案:仔细检查抗体,确认转膜无误。 经验:若X光片完全无显色,抗体加错可能性大。若有细微条带,可能是蛋白上样量不足或一抗浓度过低。 𐟓Š 案例二:高背景的困扰 可能原因:封闭不充分、一抗浓度过高、洗膜时间不足。 解决方案:降低一抗浓度,增加洗膜时间。 经验:高背景常见于WB中,目的条带清晰但背景弥漫。注意操作规范,洗膜时间不少于5min*5次或10min*3次。 𐟓Š 案例三:非特异性条带的挑战 可能原因:一抗非特异性结合。 解决方案:更换一抗。 经验:非特异性条带多因一抗质量不佳。可利用阴性对照和阳性对照确定目的条带。 𐟓Š 案例四:边缘规则的白圈 可能原因:电转中膜与胶之间存在气泡。 解决方案:转膜前去除气泡。 经验:电转液倒入盘内,高度与滤纸齐平。检查滤纸与胶之间有无气泡,用U型膜接触胶中间,慢慢放下膜。 𐟓Š 案例五:条带中间出现白色(反白) 可能原因:中心部位底物消耗过快。 解决方案:降低蛋白量,降低一抗和二抗浓度。 经验:在底物消耗前定影X光片,或从降低蛋白量和抗体浓度入手。

WB实验封闭液:速封VS脱脂 在进行Western Blot(WB)实验时,封闭液的选择至关重要,它能够影响实验的最终结果。封闭液的主要作用包括: 阻止非特异性结合 最小化非特异性背景 保持膜湿润 如果封闭效果不佳,会增加背景信号,降低目标蛋白的信号强度,从而影响实验效果。以下是两种常见的封闭液:脱脂奶粉和BSA,以及它们各自的优缺点。 脱脂奶粉 𐟥› 优点:价格便宜,容易购买。 缺点:成分复杂,适用范围有限。 温度过高时容易变质,产生异味或絮状沉淀。 封闭时间长,通常需要在室温下放置2小时,或者4℃过夜。 含有少量生物素和碱性磷酸酶残留,可能导致背景增加。 自身含有生物素,不能用于生物素标记的抗体系统。 BSA 𐟧스𜘧‚𙯼š成分单一,适用于大多数情况。 缺点:封闭时间长,通常需要在室温下放置2小时,或者4℃过夜。 用量大,成本较高。 BSA有很强的免疫原性,可能导致产生针对BSA的抗体,从而产生交叉反应。 动物源,可能含有杂质,与一抗、二抗非特异性结合。 新型快速封闭液 𐟚€ 随着科技的进步,现在有一种新型的封闭液可以替代脱脂奶粉和BSA,它具有以下优点: 封闭时间短,仅需10分钟。 兼容室温、低温、37℃等多种温度。 成分单一明确,无动物源,不与抗体非特异性结合。 能够有效降低背景,提高信噪比。 封闭效果优于传统封闭液及其他同类封闭液。 选择合适的封闭液能够确保WB实验的顺利进行,并获得高质量的实验结果。

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